Biodiesel-FTIR 1/2

Biodiesel-FTIR 1/2

  

BIODIESEL, FTIR 1/2 

 

A diferencia del combustible derivado del petroleo , cuya combustión libera como CO2 al carbono más antiguamente almacenado, el uso de biodiesel sólo libera el carbono atrapado durante la fotosíntesis más reciente de la biomasa.

De esta manera se le suele considerar, aunque no sea estrictamente cierto, como neutro en carbono, y ofrece el camino más veloz para lograr una reducción global de la emisión de carbono por parte del combustible utilizado en transporte, siendo parte de la agenda política y económica global.

A finales del año 2008 la capacidad de la Unión Europea fue  de 10M toneladas anuales, la de los Estados Unidos de 5M toneladas anuales, y la del sudeste asiático de entre 5M y 15M toneladas anuales.

Tomando como unidad una planta de capacidad entre 50.000 y 100.000 toneladas anuales (capacidad típica en las plantas en proceso de construcción), esto significará unas 1.000 plantas para el año 2012 aproximadamente.

Una eventual restricción de la capacidad en la industria de producción de biodiesel es altamente probable, debido al desajuste entre la inversión en plantas planificada (ya elevada) y los objetivos políticos estipulados para el reemplazo de los combustibles provenientes del petróleo. Un factor clave en la industria será alcanzar el 100% de su capacidad, lo que suele afectar las condiciones de contorno en la calidad del producto. Este es un mercado en donde las grandes firmas de diseño e ingeniería de construcción están involucradas.

 ¿Qué es el Biodiesel?

El biodiesel es un  combustible para transportes extraído principalmente de aceites vegetales orgánicos ( aceite de colza, de palmera, etc..) a través de un proceso llamado transesterificación.

Sus principales ventajas ante otros tipos de combustibles son las siguientes:

  • Es un recurso renovable y biodegradable
  • No es tóxico y sus emisiones son significativamente menores
  • Consta de mayor lubricidad, lo que prolonga la vida de los motores
  • Puede ser usado en motores no modificados
  • Puede ser usado puro o mezclado
  • Es fácil de producir
  • Posee un alto punto de ignición, lo que lo hace más seguro de almacenar y de transportar
  • Ha sido clasificado como “no-peligroso”

 

El proceso básico consiste en la conversión de aceites vegetales crudos (triglicéridos) a su ester metílico de ácidos grasos, a través de un proceso llamado transesterificación.

La transesterificación está basada en la reacción química de los triglicéridos con metanol para formar metilésteres y glicerina en presencia de un catalizador alcalino.

Esta reacción se efectúa en un equipo mezclador-asentador de dos etapas. El proceso se desarrolla en la sección de mezclado, mientras la subsiguiente sección de decantación permite la separación de metilésteres como la fase liviana y la glicerina y el agua como la fase pesada.

Un paso posterior de lavado contra corriente para los metilesteratos remueve una pequeña cantidad de subproductos de la reacción y proporciona un biodiesel “listo para usar” después del paso final de secado.

El metanol sobrante contenido en el agua de glicerina es removido en una columna de rectificación, lo que da como resultado un metanol de condición y pureza listo para ser usado como flujo de reciclado para el proceso.

Para una mayor purificación del agua de glicerina, existen pasos ulteriores y opcionales: tratamiento químico, evaporación, destilación, blanqueado. El proceso de producción de biodiesel posee un muy alto rendimiento, pues con 1 kg de aceite vegetal se genera 1 kg de biodiesel, con un consumo.

Si quieres más información, puedes contactarme en:

También  a través del teléfono: 976 013300

Nuevo flyer “Immunofluorescence”

Nuevo flyer“Immunofluorescence”

http://www.ibidi.de/service/display_material/FL_8XXXX_Immun_150dpi.pdf

Disponible on line , este flyer engloba los siguientes productos

  •  µ-Dish 35 mm, high
  • µ-Slide 8 well
  • µ-Slide VI 0.4
  • µ-Slide I 0.2 Luer
  • µ-Chamber 12 well
  • Culture-Insert StemCell
  • Mounting Medium
  • Freezing Medium

Si quieres más información, puedes contactarme en:

elena.gonzalez@inycom.es

También  a través del teléfono: 976 013300

Sistemas de concentración por vacío MiVac de Genevac

Os quiero presentar nuestra línea de productos para la concentración de muestras de una forma rápida, limpia y eficaz.

 

MiVac se basa en la tecnología del vacío. Mediante nuestras bombas de membrana conseguimos bajar el punto triple de los solventes y así favorecer la evaporación de los mismos llevando a nuestras muestras a la concentración que deseemos.

Pueden utilizarse en un amplio rango de aplicaciones tales como toxicología/ADME, química de polímeros, DNA, RNA & peptídicos, oligosíntesis, medicina forense, tests de drogas, ciencia alimenticia e investigación agroquímica.

El tamaño compacto de los concentradores MiVac ahorra un espacio valioso en la mesa de trabajo.

Su diseño sencillo y robusto garantiza años de servicio fiables incluso cuando se utilice de manera intensiva, como por ejemplo en la enseñanza ó en laboratorios con varios usuarios. Sus intuitivos controles permiten a aquellos usuarios inexpertos obtener excelentes resultados con la mayoría de las muestras, mientras que para aquellos usuarios más avanzados dispone de programas más sofisticados.

MiVac admite distintas configuraciones según las necesidades de vuestro laboratorio. Con ellas podéis evaporar gran variedad de solventes para un número elevado de muestras, esta es una de las grandes ventajas de estos sistemas.

MiVac está formado por tres elementos principales:

–          Concentrador MiVac: se selecciona según el número de muestras que el usuario quiera concentrar y dispone de gran variedad de rotores intercambiables para trabajar con diferentes volúmenes de tubos, viales e incluso con placas microtiter.

–          Bombas MiVac: determinamos el tipo de bomba que cada usuario necesita según los solventes que quiere evaporar. Se trata de bombas de membrana que no necesitan mantenimiento.

–          Trampa fría: es una de las grandes diferencias del fabricante. Se trata de un sistema de fácil vaciado, accesible y sin mantenimiento

Y como una imagen vale más que mil palabras os presento una configuración:

Próximamente más…

Un saludo a tod@s

Si quieres más información, puedes contactarme en:

rosario.lopez@inycom.es

También  a través del teléfono: 976 013300

Determinación de H2O Libre de Química

 

Hola de nuevo,

Deseo presentaros un nuevo equipo fabricado por BERGHOF.

 

Este equipo es capaz de determinar la concentración del agua de la muestra de una manera rápida, eficaz, precisa, sencilla y respetuosa con el medioambiente .

 El Equipo

Mide la cantidad de agua de la muestra mediante

termo-coulombimetría .

El agua de la muestra es evaporada y transportada, con un gas portador, a un sensor coulombimétrico selectivo al agua.

Usando un perfil de temperatura como programa de calentamiento se obtiene la identificación, diferenciación y determinación de las diferentes formas de enlace del agua.

 

El Sensor

 

Consiste en una capa de P2O5 higroscópico el cual absorbe el agua del gas portador. Mediante la electrólisis del agua capturada se produce una carga eléctrica que está  directamente relacionada con el contenido del agua, según la ley de Faraday.

Este mismo sensor cumple las siguientes normativas para la determinación de agua en gases:

 

DIN 50450-1  –  ASTM D 5454  –  ISO 11541:1997.

La Técnica

Sorprende su facilidad de manejo, consiste en:

  •  Cargar el programa de perfil de temperaturas en el software
  • Pesar la muestra
  • Introducir la muestra al horno
  • Y…  empezar el análisis.

Los resusltados que se obtienen son totalmente  comparables a otras técnicas para la determinación del agua como el KARL FISCHER.

Es por lo tanto un novedoso equipo en el mercado en el que sólo se pueden nombrar ventajas como:

  • LIBRE DE REACTIVOS QUIMICOS
  • DETERMINACION SELECTIVA DEL AGUA
  • DIFERENCIACION ENTRE LAS DIFERENTES FORMAS DE AGUA
  • FACIL DE OPERAR Y PREPARADO EN TODO MOMENTO
  • RESPETUOSO CON EL MEDIOAMBIENTE

Si quieres más información, puedes contactarme en:

esteban.gallego@inycom.es

También  a través del teléfono: 976 013300

Functional Cell Based Assays Optimized for Microscopy

Functional cell based assays have attracted a lot of interest in various fields of biological research.

Traditionally, the focus of analysis was on molecular function and localization of proteins in living and dead cells. More recently, a need has developed for assays that explore the function of cells and to test how different substances affect the cells ability towards chemotactic and non directed migration, building new blood vessels and the reaction to shear stress in blood flow.

 These assays will play an important role in the basic research used to understand the biology of cancer and endothelial cells. They will also be valuable for performing high content screening of drugs in the fields of cancer and arteriosclerosis. In the last few years improvements in micro-structuring and the use of non-traditional materials, such as soft silicone, have increased the number of tools and devices for use in functional cell based assays.

 At ibidi, we use technologies, like microinjection molding, to create products that mimic in vivo conditions of cells and are also optimized for microscopy. Varying only one parameter, while keeping the environment at standard conditions, gives access to the response of cells uncoupled from other effects. This is now possible through distinguished assays that quantitatively measure the strength of chemotaxis, tube formation, and wound healing velocity (See Figure 1).

 

 

 

Angiogenesis

 

The ibidi angiogenesis assay is based on a slide that uses a “well-in-a-well” format.

This minimizes meniscus formation and drastically reduces the amount of costly reagents like Matrigel (TM of Becton Dickinson).

High quality microscopy images can be taken and analyzed in an automated way (shown on the left side of Figure 1c). A set of different parameters, such as tube length or nodes, are calculated for quantification.

 

Chemotaxis

 

The µ-Slide Chemotaxis can be used to measure the migration of slow moving adherent cells, like HT-1080 or endothelial cells.

Due to the slow movement of these cells, it is important to maintain a stable gradient for more than 24 hours.

 This is achieved by a small gap located between two reservoirs serving as sink and source of the gradient.

The transport of the chemokine is minimized through this microstructure (height of only 70 µm), that simultaneously serves as an observation field.

 A second version of this slide is available for visualizing the interstitial migration of cells simulated by a gel matrix. The position of at least 40 cells per test is tracked over time and plotted as shown in Figure 1h. The chemotaxis effect is quantified by parameters calculated by our Chemotaxis and Migration Tool (Reference).

 

Wound Healing

 

Traditionally, the Scratch Assay has been used to study the collective migration of cells.

The biggest disadvantage of this technique is reproducibility.

The affect of the scratch to culture surfaces, like protein coatings, is dependent on each user.

 Instead of removing cells by creating a scratch, the Culture-Insert (made of a soft silicone) makes a defined cell-free gap between two cell patches. With the use of image analysis, the change in cell covered area can be derived and plotted over time (Figure 1 l).

Recently, ibidi and Wimasis GmbH collaborated and developed a fully automated image analysis solution for wound healing and tube formation assays. We are also working on an automated solution for tracking single cells imaged with phase contrast that will be useful for non-invasive chemotaxis assays.

On the right side of Figure 1, our flow assay is shown. ibidi’s disposable flow chambers are connected to our perfusion system which is able to be used inside cell culture incubators. Using this system, endothelial cells can be cultured under flow conditions over long periods, such as days or weeks. The typical alignment of endothelial cells is shown in Figure 1o and enlarged in Figure 1p.

In the near future, ibidi plans to take the functional cell based assays introduced here and transfer them to formats for medium to high throughput, such as the angiogenesis assay in a 96-well format.

 

Contact

Dr. Roman Zantl

ibidi GmbH

Am Klopferspitz 19

82152 Planegg/Martinsried

Phone.: +49 (0)89 520 46 17-0

FAX: +49 (0)89 520 46 17-59

E-Mail: info@ibidi.de or elena.gonzalez@inycom.es

www.ibidi.com

Figure 1: Overview of four different functional cell based assays.

Row 1: slides used for the assays.  Row 2: working principle.

Row 3: representative image to be analysed. Row 4: quantitative data.

a-d – µ-Slide Angiogenesis: tube formation assays can be done without meniscus formation on the gel medium surface.

e-h – µ-Slide Chemotaxis:  allows the analysis of chemotactic individual cell migration in dissolved chemical gradients.

i-l – Culture Insert:  collective migration can be investigated with high reproducibility.

m-p – Flow Assays: used to simulate endothelial behaviour under in vivo like perfusion conditions.

Instrumentación y Componentes, S.A. * Powered by INYCOM